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支原體污染細胞后清除支原體常用方法有哪些?

更新時間:2022-01-11點擊次數(shù):1917

1)對于非重要的細胞,如培養(yǎng)中的細胞、WCB的細胞等,將培養(yǎng)物與用過的培養(yǎng)基滅活后丟棄即可。對于較為重要的細胞,如來源珍貴或實驗室中細胞保藏量較小等可以采用以下(2)-(8)的方法。


2)動物體內接種除菌法:把受支原體污染的腫瘤細胞接種在同種動物皮下或腹腔中,借動物免疫系統(tǒng)消滅支原體,而腫瘤細胞卻能在體內繼續(xù)生長,待一定時間后,從體內取出細胞再進行培養(yǎng)繁殖。



3)用清洗純化法清除支原體污染的方法:細胞營養(yǎng)馴化→優(yōu)質細胞群的篩選→細胞清洗→反復離心洗滌,其原理是利用離心力、細胞、微生物質量和懸液的浮力差達到清除支原體的目的。由于支原體個體小且除發(fā)酵支原體外多為細胞外寄生,所以通過反復洗滌細胞和低速離心換液使其中潛在的支原體數(shù)量降低至jixian. 如結合敏感抗生素的抑殺作用,可達到更好的效果。


4)藥物輔助加溫處理:先用藥物處理后,再將污染的組織培養(yǎng)物放在41℃培養(yǎng)18小時,可殺死支原體,但對細胞有不良影響。


5)使用支原體特異性血清:用5%的兔支原體免疫血清可去除支原體污染,因特異抗體可抑制支原體生長,故經抗血清處理后11天即轉為陰性,并且5個月后仍為陰性。


6)用MRA處理:用支原體清除劑(Mycoplasma Removal Agent)處理細胞,作用濃度為 25μg/ml,兩周可以清除支原體。

7)巨噬細胞吞噬法:從動物腹腔采取巨噬細胞,為排除其它細胞成分,可*行純化,然后再加入被支原體污染的細胞培養(yǎng)液中混合培養(yǎng)。在培養(yǎng)過程中,為檢查支原體是否已被消除干凈,可利用支持物培養(yǎng)法驗證,取出支持物逐日染色、鏡檢觀察,至支原體已被消除干凈為止。


8)使用支原體清除培養(yǎng)基,每2~3天更換1次新鮮培養(yǎng)液,換液時用無菌的pingheng鹽溶液洗滌細胞1~2次;期間如果細胞密度過大,請保持細胞密度適當(貼壁細胞可能需要用胰酶消化),并更換新的培養(yǎng)器皿,3天之后,即可見明顯清除效果;處理15天后,可以用支原體檢測試劑盒進行檢測,檢測支原體是否殺滅*;如果仍有支原體殘留,可以考慮再處理6天;為避免細胞再次受到“支原體"的污染,以后每隔1個月進行支原體的常規(guī)檢測,以保證沒有新的支原體污染。


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